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  • Beitragsserien: Persistente Organische Schadstoffe
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Aufnahmepfade von POPs in Biota

Biomagnification of hexachlorobenzene: Influence of uptake routes in a laboratory test

Biomagnifikation von Hexachlorbenzol im Labortest

Zusammenfassung

POPs (persistente organische Schadstoffe), die an aquatischen Sedimenten binden, können zurück in Nahrungsnetze gelangen und so zu einem Risiko für aquatische Organismen werden. Dabei kann die Bioakkumulation solcher Substanzen in endobenthischen, sedimentfressenden Invertebraten (z.B. aquatische Oligochaeten) eine große Rolle spielen. Diese Würmer dienen vielen benthivoren Fischen als Nahrung. Letztere nehmen über diesen Weg sedimentgebundene Chemikalien auf und können hierbei deutlich höhere Körperkonzentrationen (body residues) erreichen als durch die Anreicherung aus der Wasserphase. Die angereicherten Rückstände können im weiteren Verlauf der Nahrungskette an Glieder höherer trophischer Ebenen weitergegeben werden.

Zur standardisierten Bestimmung der Bioakkumulation und — magnifikation wurde eine einfache, zwei trophische Stufen umfassende Labornahrungskette etabliert. Diese bestand aus dem endobenthischen Oligochaeten Tubifex tubifex und dem Dreistachligen Stichling (Gasterosteus aculeatus) als Prädator. Die Experimente wurden mit 14C-markiertem Hexachlorbenzol in dotiertem künstlichem Sediment und rekonstituiertem Wasser durchgeführt. Um den Einfluss benthischer Beuteorganismen zu quantifizieren, wurden die Fische gegenüber dotiertem Wasser bzw. Sediment (Biokonzentration), vorexponierten Würmern (Biomagnifikation) und Kombinationen dieser Aufnahmepfade exponiert.

HCB wurde entlang der Labornahrungskette deutlich angereichert. Es konnte gezeigt werden, dass die Exposition gegenüber der Kombination sämtlicher Aufnahmepfade zu deutlich höherer Anreicherung in den Fischen führte als im Falle einzelner Expositionspfade. Der Vergleich der Einzelergebnisse ließ den Schluss zu, dass neben dem freien Wasserkörper die kontaminierte Nahrung der Hauptaufnahmeweg für den Fisch war. Bei der Bewertung von POPs wie HCB hinsichtlich Biomagnifikation und ‘secondary poisoning’ sollten daher Nahrung und Sediment als Expositionspfade unter Verwendung von Nahrungsketten-modellen und/oder Labortests stärker berücksichtigt werden.

Abstract

POPs (persistent organic pollutants) associated with aquatic sediments can pose a risk to aquatic food chains, since they can be re-introduced to the food web. One major pathway is the bioaccumulation of POPs by endobenthic, sedimentingesting invertebrates (especially tubificid oligochaetes). These worms serve as food for benthivorous fish, which thereby ingest the sediment-borne chemicals and may accumulate contaminant concentrations far higher than from water exposure alone, and consequently transfer them to organisms of higher trophic levels.

In order to evaluate such a potential biomagnification, a laboratory test was developed. It consisted of a two-step food chain including the sediment dwelling freshwater oligochaete Tubifex tubifex (Müller) and the three-spined stickleback (Gasterosteus aculeatus, Linné), a small teleost fish which often feeds primarily on benthic invertebrates. Artificial sediment and reconstituted water were used. To examine the influence of benthic prey on the bioaccumulation of a POP in the predator, fish were exposed to 14C-labelled hexachlorobenzene via spiked water, spiked sediment, pre-contaminated prey organisms, and to combinations of these exposure routes.

Summarising the results of these experiments, it could be shown that the exposure to HCB via different routes resulted in a significantly higher accumulation in fish than an exposure to single pathways. It was concluded that the major uptake routes for fish were the overlying water and the food, whereas the contribution of spiked sediment itself was relatively small. HCB was biomagnified in the rested laboratory food chain. Therefore, concerning secondary poisoning, the environmental risk assessment of POPs like HCB should not be based on existing bioaccumulation tests alone, since they focus only on exposure via the water pathway. Instead, the influence of food and sediment as exposure routes should be considered as well, using comprehensive food chain modelling and/or laboratory studies.

Literatur

  • ASTM (2000): Standard guide for determination of the bioaccumulation of sediment-associated contaminants by benthic invertebrates. American Society for Testing and Materials, E 1688-00a. 54 pp.

  • Beek B, Boehling S, Bruckmann U, Franke C, Joehncke U, Studinger G (2000): The assessment of bioaccumulation. In: Hutzinger O (Hrsg): The Handbook of Environmental Chemistry. Vol. 2, Part J (Vol. ed: B Beek). Bioaccumulation — New Aspects and Developments. Springer-Verlag, Berlin Heidelberg, 235–276

    Google Scholar 

  • Bouché M-L, Habets F, Biagianti-Risbourg S, Vernet G (2000): Toxic effects and bioaccumulation of cadmium in the aquatic oligochaete Tubifex tubifex. Ecotox. Environ. Safety 46, 246–251

    Article  Google Scholar 

  • BUA (1994): Hexachlorbenzol. BUA-Stoffbericht 119. Hrsg: Beratergremium für umweltrelevante Altstoffe (BUA) der Gesellschaft Deutscher Chemiker. Hirzel Wissenschaftliche Verlasgesellschaft, Stuttgart: 294 pp.

    Google Scholar 

  • Campfens J, Mackay D (1997): Fugacity-based model of PCB bioaccumulation in complex aquatic foodwebs. Environ. Sci. & Technol. 31 577–583

    Article  CAS  Google Scholar 

  • Clements WH, Oris JT, Wissing TE (1994): Accumulation and food chain transfer of fluoranthene and benzo[a]pyrene in Chironomus riparius and Lepomis macrochirus. Arch. Environ. Contam. Toxicol. 26, 261–266

    Article  CAS  Google Scholar 

  • De Boer J, Smedes F, Wells D, Allan A (1999): Report on the QUASH interlaboratory study on the determination of total-lipid in fish and shellfish. Round 1 SBT-2. Exercise 1000. EU Standards, Measurement and Testing Programme, 20 pp.

  • De Bruijn J, Busser F, Seinen W, Hermens J (1989): Determination of octanol/water partition coefficients for hydrophobic organic chemicals with the, slow-stirring’ method. Environ. Toxicol. Chem. 8, 499–512

    Article  Google Scholar 

  • DIN (1985): DIN No. 38414. Schlamm und Sedimente (Gruppe S) Teil 2: Bestimmung des Wassergehaltes und des Trockenrückstandes bzw. der Trockensubstanz (S2). Teil 3: Bestimmung des Glührückstandes und des Glühverlustes der Trockenmasse eines Schlammes (S3). In: Fachgruppe Wasserchemie in der Gesellschaft Deutscher Chemiker (GDCh) (Hrsg): Deutsche Einheitsverfahren (DEV) zur Wasser-, Abwasser- und Schlammuntersuchung. VCH, Weinheim, New York, 12 pp.

    Google Scholar 

  • DiPinto LM, Coull BC (1997): Trophic transfer of sedimentassociated polychlorinated biphenyls from meiobenthos to bottom-feeding fish. Environ. Toxicol. Chem., 16 2568–2575

    Article  CAS  Google Scholar 

  • DiToro DM, Zarba CS, Hansen DJ, Berry WJ, Swartz RC, Cowan CE, Pavlou SP, Allen SE, Thomas NA, Paquin PR (1991): Technical basis for establishing sediment quality criteria for nonionic organic chemicals using equilibrium partitioning. Environ. Toxicol. Chem. 10, 1541–1583

    Article  CAS  Google Scholar 

  • EC (1996): Technical Guidance Documents in Support of Commission Directive 93/67/EEC on Risk Assessment for New Notified Substances and Commission Regulation (EC) No. 1488/94 on Risk Assessment for Existing Substances. Office for Official Publications of the EC (European Commission), Luxembourg; Part I–IV, 739 pp.

  • Egeler P, Roembke J, Meller M, Knacker T, Franke C, Studinger G, Nagel R (1997): Bioaccumulation of lindane and hexachlorbenzene by tubificid sludgeworms (Oligochaeta) under standardised laboratory conditions. Chemosphere 35, 835–852

    Article  CAS  Google Scholar 

  • Egeler P, Meller M, Roembke J, Spoerlein P (2001): Tubifex tubifex as a link in food chain transfer of hexachlorobenzene from contaminated sediment to fish. Hydrobiologia (im Druck).

  • Ekelund R, Bergman Å, Granmo Å, Berggren M (1990): Bioaccumulation of 4-nonlylphenol in marine animals — a reevaluation. Environ. Pollut., 64 107–120

    Article  CAS  Google Scholar 

  • Environment Canada (1990): Biological test method: acute lethality test using the threespine stickleback (Gasterosteus aculeatues). Environmental Protection Series. Report EPS 1/RM/10, 45 pp.

  • Fisk AT, Norstrom RJ, Cymbalisty CD, Muir DCG (1998): Dietary accumulation and deputation of hydrophobic organochlorines: Bioaccumulation parameters and their relationship with the octanol/water partition coefficient. Environ. Toxicol. Chem. 17, 951–961

    Article  CAS  Google Scholar 

  • Gobas FAPC (1993): A model for predicting the bioaccumulation of hydrophobic organic chemicals in aquatic food webs: Application to Lake Ontario. Ecol. Model. 69, 1–17

    Article  CAS  Google Scholar 

  • Gobas FAPC, Wilcockson JB, Russel RW, Haffmer DD (1999): Mechanism of biomagnification in fishes under laboratory and field conditions. Environ. Sci. Technol. 33, 133–141

    Article  CAS  Google Scholar 

  • Ingersoll CG, Ankley, GT, Benoit DA, Brunson EL, Burton GA, Dwyer FJ, Hoke RA, Landrum PF, Norberg-King, TJ, Winger PV (1995): Toxicity and bioaccumulation of sediment-associated contaminants using freshwater invertebrates: A review of methods and applications. Environ. Toxicol. Chem. 14, 1885–1894

    Article  CAS  Google Scholar 

  • Kolok AS, Groetsch KJ Oris JT (1996): The role of water ventilation and sediment ingestion on the uptake of hexachlorobenzene by Gizzard Shad (Dorosoma cepedianum) Environ. Toxicol. and Chem. 15, 1760–1762

    Article  CAS  Google Scholar 

  • Kosiorek D (1974): Development cycle of Tubifex tubifex Müll. in experimental culture. Polskie Archiwum Hydrobiologii 21, 411–422

    Google Scholar 

  • Kuchl DW, Haebler R, Potter C (1991): Chemical residues in dolphins from the U.S. atlantic coast including Atlantic Bottlenose obtained during the 1987/88 mass mortality. Chemosphere 22, 1071–1084

    Article  Google Scholar 

  • Landrum PF, Fisher SW (1998): Influence of lipids on the bioaccumulation and trophic transfer of organic contaminants in aquatic organisms. in: Arts M, Wainman B (Hrsg). Lipids in freshwater ecosystems. Springer-Verlag, New York, 203–234

    Google Scholar 

  • Lores EM, Patrick JM, Summers JK (1993): Humic acid effects on uptake of hexachlorobenzene static sediment/water systems. Environ. Toxicol. Chem. 12, 541–550

    Article  CAS  Google Scholar 

  • Meller M, Egeler P, Roembke J, Schallnass H, Nagel R., Streit B (1998): Short-term toxicity of lindane, hexachlorobenzene and copper sulfate to tubificid sludgeworms (Oligochaeta) in artificial media. Ecotox. Environ. Safety 39, 10–20

    Article  CAS  Google Scholar 

  • Muir D, Braune B, DeMarch B, Norstrom R, Wagemann R, Lockhart L, Hargrave B, Bright D, Addison R, Payne J, Reimer K (1999): Spatial and temporal trends of contaminants in the Canadian Arctic marine ecosystem: a review. Sci. Total Environ. 230, 83–144

    Article  CAS  Google Scholar 

  • Nendza M, Herbst T, Kussatz C, Gies A (1997): Potential for secondary poisoning and biomagnification in marine organisms. Chemosphere 35, 1875–1885

    Article  CAS  Google Scholar 

  • OECD (1984): Guidelines for Testing of Chemicals No. 207. Earthworm, Acute Toxicity Test. Organisation for Economic Cooperation and Development (OECD), Paris: 9 pp.

    Google Scholar 

  • OECD (1992): Guidelines for Testing of Chemicals No. 203. Fish, Acute Toxicity Test. OECD, Paris: 9 pp.

    Google Scholar 

  • OECD (1996): Guidelines for Testing of Chemicals No. 305. Bioconcentration: Flow-through Fish Test. OECD, Paris: 23 pp

    Google Scholar 

  • Rinderhagen M, Butte W (1995): Kinetics of accumulation and elimination of isomeric hexachlorocyclohexanes by tubificids. SAS and QSAR in Environmental Research 4, 131–138

    Article  CAS  Google Scholar 

  • Rodriguez P, Reynoldson TB (1999): Laboratory methods and criteria for sediment bioassessment. In: Mudroch A, Azcue JM, Mudroch P (Hrsg): Manual of Bioassessment of aquatic sediment quality. Lewis Publishers/CRC Press LLC, Boca Raton, 83–133

    Google Scholar 

  • Schuytema GS, Krawczyk DF, Griffis WL, Nebeker AV, Robideaux ML (1988): Comparative uptake of hexachlorobenzene by fathead minnows, amphipods and oligochaete worms from water and sediment. Environ. Toxicol. Chem. 7, 1035–1045

    Article  CAS  Google Scholar 

  • Sijm DTHM, Hermens JLM (2000): Internal effect concentration: link between bioaccumulation and ecotoxicity of organic chemicals. In: Hutzinger O (ed). The Handbook of Environmental Chemistry, Vol. 2 Part J (Vol. ed: B. Beek), Bioaccumulation — New Aspects and Developments. Springer-Verlag, Berlin Heidelberg: 167–200

    Google Scholar 

  • Taastrøm H-M, Jacobsen L (1999): The diet of otters (Lutra lutra L.) in Danish freshwater habitats: comparisons of prey fish populations. J. Zool. Lond. 248, 1–13

    Google Scholar 

  • Tchounwou PB, Abdelghani AA, Pramar YV, Heyer LR (1998): Health risk assessment of hexachlorobenzene and hexachlorobutadiene residues in fish collected from a hazardous waste contaminated werland in Louisiana, USA. In: Little EE, DeLonay AJ, Greenberg BM (Hrsg): Environmental Toxicology and Risk assessment 7, ASTM STP 1333, 368–382

  • Thiel R, Mehner T, Koepcke B, Kafemann R (1996): Diet niche relationship among early life stages of fish in German estuaries. Mar. Freshwat. Res. 47, 123–136

    Article  Google Scholar 

  • Weinstein JE, Oris JT (1999): Humic acids reduce the bioaccumulation and photoxicity of fluoroanthene to fish. Environ. Toxicol. Chem. 18, 2087–2094

    Article  CAS  Google Scholar 

  • Wootton RJ (1984): A functional biology of sticklebacks. Functional Biology Series. Croom Helm, London & Sydney: 265 pp.

    Google Scholar 

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Correspondence to Philipp Egeler.

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OnlinerFirst: 31. 08. 2001

Philipp Egeler studierte Biologie (Diplom) an der Johannes Gutenberg-Universität Mainz und promovierte 1997 über die Bioakumulation sedimentgebundener Schadstoffe in benthischen Oligochaeten. Seit 1996 ist Philipp Egeler bei der ECT Oekotoxikologie GmbH als Wissenschaftlicher Angestellter tätig. Neben der Leitung und Betreuung wissenschaftlicher Forschungsprojekte sowie der Entwicklung und Durchführung ökotoxikologischer Testvertahren zur Abschätzung der Umweitrisiken vons Chemikalien gilt sein besonderes interesse der Bioakkumulation und der Sedimenttoxizität von Umweltchemikalien und Pestiziden.

Michael Meller studierte Biologie (Diplom) an der Johann Wolfgang v. Goethe-Universität Frankfurt/Main. Nach einem halbjährigen Forschungsaufenthalt in Brasillien im Anschluss an seine Diplomarbeit beschätit er sich seit 1997 bei der ECT Oekotoxikologie GmbH mit dem Verhalten und der Wirkung von Chemikalien in aquatischen Systemen. Hierbei stellen kontaminierte Sedimente einen wichtigen Schwerpunkt seiner Arbeit dar. Im Rahmen der hier vorgestellten Studie gestaltete und betreute er die verschiedenen experimentellen Ansätze.

Jörg Römbke studierte ebenfalls Biologie (Dipiom) an der Johann Wolfgang v. Goethe-Universität Frankfurt/Main und promovierte auf dem Gebiet der terrestrischen Ökotoxikologie. Seit 1994 ist er einer der drei Geschäftsführer der ECT Oekotoxikologie GmbH. Jörg Römbke ist vor allem auf den Gebieten ‘Entwicklung und Validierung ökotoxikologischer Testverfaren’ sowie ‘Environmental Risk Assessment’ von Chemikalien tätig.

Reter Sprörlein war bis Januar 2000 als Ingenieur für Umweltverfahrenstechnik bei der ECT Oekotoxikologie GmbH beschäftigt und für die HPLC-analytische Aufarbeitung der experimentellen Proben verantwortlich.

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Egeler, P., Meller, M., Mömbke, J. et al. Aufnahmepfade von POPs in Biota. UWSF - Z Umweltchem Ökotox 13, 284–290 (2001). https://doi.org/10.1065/uwsf2001.08.065

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